超净台的使用

1. 在使用前开紫外消毒20min
2. 20min之后打开正压通风后关闭紫外灯
3. 进入超净台之前将双手、实验用品进行酒精消毒
4. 打开玻璃面板将手伸入，注意玻璃面板不能太高，手能进入即可
5. 在超净台内点燃酒精灯，注意不要在风口点燃，避免着火

移液枪的使用

1. 选择合适量程的移液枪，并将量程调节到指定大小
2. 插入大小合适的枪头，确保枪头插紧
3. 移液枪有两档，按压感受到轻微阻力为一档，按压到底为二档
4. 吸取液体时应使用一档，但吸取液体较为粘稠时可以使用二档
5. 吸取液体时请将枪头位于液面之下，避免吸入气泡导致体积不准确
6. 排出液体时应使用二档，建议在二档位置多按压一会，确保液体全部排出
7. 枪头最好一次一换，避免污染；但如果是向多个空试管中加入同样试剂，可以不换枪头

台式离心机，高速离心机，低温离心机etc

1. 离心机的使用需要注意配平，保证中心对称即可。如未配平，离心机会发出较大的噪声，需立刻终止离心并配平试剂。
2. 离心结束之后需要等完全停转之后再打开离心机
3. 低温离心机需提前遇冷，且结束后需避免温度骤变

高压灭菌锅的使用

1. 使用高压灭菌锅为枪头灭菌时，需要提前用遇热变色的胶带封好；同时，有条件的情况下建议使用报纸将枪头盒打包，可以避免过多的水汽
2. 灭菌完成之后，切记等压力指示剂归零，温度低于xx℃之后再发开灭菌锅！

-80℃ ，-20℃，4℃冰箱etc.

1. 做好标签，定期整理
2. 确定电源在不易被接触到的地方，建议配备温度报警功能
3. 避免频繁的长时间开门，容易导致样品反复冻融

分光光度计

1. 打开分光光度计，等待一会儿，以保证数据稳定
2. 选择合适的波长，根据实验需求调整分光光度计的检测参数
3. 准备比色皿，确保比色皿清洁无污染，使用前用蒸馏水或样品溶液冲润洗
4. 加入样品时，避免气泡影响测量精度，液面应保持在比色皿光路范围内
5. 以空白对照溶液进行Blank设置，确保测量基线正确
6. 插入样品比色皿，确保其方向一致，避免因透光率差异导致误差
7. 读取并记录吸光度（Abs）或透光率（%T），如有多个样品，依次测量并记录数据
8. 结束实验后，清洁比色皿，关闭设备，并妥善存放分光光度计

酶标仪

1. 启动仪器，等待一会儿，以保证检测稳定性
2. 选择检测模式（如吸光度、荧光、化学发光等），设定波长（单波长或双波长）、检测孔位范围及震荡时间（若需混匀液体）
3. 进行空白校正（使用缓冲液或培养基），或按说明书运行自动校准程序，确保检测精度
4. 将酶标板平稳放入载板槽，确保 A1 孔对齐仪器标记方向，避免孔位偏移导致检测错误
5. 确保孔内液面平整，无气泡或挂壁液滴，必要时轻敲板面或离心去除气泡
6. 确认参数无误后开始检测，过程中勿移动或打开舱门，避免数据异常
7. 检测完成后，及时导出数据至电脑或 U 盘，部分仪器支持直接打印结果
8. 取出酶标板后，用软布擦拭载板槽；若液体溅出，立即用无水乙醇清洁并晾干。关闭电源，长期不用时拔除电源线并覆盖防尘罩

PCR，qPCR仪

1. 打开 PCR 或 qPCR 仪器
2. 设置适当的程序，包括变性、退火和延伸的温度及时间参数。对于 qPCR，还需设置荧光检测的波长
3. 准备好 PCR 或 qPCR 反应混合物
4. 将反应管或 PCR 反应板平稳放入仪器的热循环模块中
5. 启动程序，等待循环结束
6. 检测完成后，及时导出数据并保存分析结果，确保数据完整

细菌培养箱

1. 打开培养箱并设定适宜的温度（通常为 37℃，具体根据细菌种类调整）
2. 将含有细菌样本的培养皿或试管放入培养箱内
3. 等待定时结束取出

摇床

1. 设置摇床的转速和时间
2. 将摇菌管固定在摇床的弹簧之间，或将培养瓶放在卡位里，确保样品不会倾洒
3. 等待定时结束取出

nanodrop

1. 打开仪器后，选择合适的分析模式，使用蒸馏水清洁测量台和光学窗口
2. 设置blank空白溶液（如缓冲液）
3. 加入 1-2 µL 样品液体到光学测量区域
4. 合上测量头，启动测量
5. 读取并记录样品浓度与纯度数据
6. 蒸馏水清洁仪器测量区域，关闭仪器

电泳仪

1. 准备好电泳缓冲液，胶，确保其高度没过上样孔
2. 确保电极正负连接正确后连接电源设置电压、电流、时间
3. 启动电泳仪，观察电泳过程，确保样品顺利迁移
4. 实验结束后确保电泳缓冲液无残留物质